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文献分享|Advanced Science | 原子修饰的gDNA增强TtAgo切割活性以实现超灵敏核酸检测
分类: 学术科普>
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2024-05-27
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大家好,今天为大家介绍一篇最近在Advanced Science上的文章,题为“Atom-Modified gDNA Enhances Cleavage Activity of TtAgo Enabling Ultra-Sensitive Nucleic Acid Testing”。作者发现2'-氟(2'F)修饰的gDNA能够增强TtAgo的dsDNA切割活性,并基于此开发了新的核酸检测策略。


 Argonautes(Ago)蛋白家族,在基因表达和防御外来核酸中发挥关键作用,能被寡核苷酸引导识别特定的核酸靶标。相较于CRISRP/Cas系统,gDNA/Ago系统具有无需PAM、gDNA简单且稳定等优点,在分子诊断和基因编辑方面具有极大应用潜力。其中,来自嗜热栖热菌的Ago(TtAgo)以DNA为引导,对单链DNA(ssDNA)具有高效的切割活性,但对dsDNA的切割活性较差,特别是在相对较低的温度(<70℃)下,这归因于gDNA与靶dsDNA的同源链具有相同的结合亲和力,TtAgo-gDNA复合物几乎不会侵入靶dsDNA激活Ago活性。因此,增加gDNA的结合亲和力来增强TtAgo的dsDNA切割活性并开发新型等温扩增方法对于快速分子诊断十分重要。

    这项研究中,作者发现3′端带有2′F-核苷酸的gDNA(2′F-gDNA)可以增加其与靶DNA和TtAgo的分子间作用力来促进TtAgo-gDNA-靶标三元复合物的组装,显著增强切割活性。基于此,提出了一种新颖的FATE反应,并开发了FAST检测策略,实现对核酸的超灵敏一锅式实时荧光分析。



/研究内容/

Research Content

2′F 修饰促进 TtAgo-gDNA-靶标三元复合物形成

    据报道,在糖、骨架、核酸碱基的3'和5'端进行适当化学修饰可以显着增加其与互补DNA的结合亲和力。此外,氟具有高度电负性,且2'-氟(2'F)寡核苷酸采用C3'-内构象,可也可显著增加结合亲和力,并使解链温度(Tm)增加。故作者首先假设2'F修饰的gDNA可能比典型gDNA能更好地激活dsDNA切割。为了验证这一假设,作者进行了Tm分析、生物分子相互作用分析和分子对接分析,如图1所示。这些数据共同表明,2′F-gDNA能够促进TtAgo-gDNA-靶标三元复合物的形成,增强TtAgo的dsDNA切割活性。


图1:2'F修饰的gDNA促进TtAgo-gDNA-靶标三元复合物的形成。 (A)F1-gDNA和C-gDNA之间的Tm比较。(B)链置换分析图示。 (C)FAM标记的F1-gDNA和C-gDNA之间链置换能力比较。(D)图1C中基于灰度值的数据。 (E)F1-gDNA 的结合亲和力。 (F)G-gDNA的结合亲和力。(G) gDNA/TtAgo/靶标三元复合物的组装效率分析。 (H)组装效率分析。


2′F-gDNA 增强 TtAgo 的 dsDNA 切割活性
    由于2'F-gDNA具有促进TtAgo-gDNA-靶标复合物组装的能力,作者进一步推测其有可能增强TtAgo的dsDNA切割活性(图2A)。图2B结果显示C-gDNA/TtAgo对ssDNA表现出更高的切割活性。而当使用F1-gDNA时,结果显示TtAgo在较宽的温度范围内能显著增强dsDNA切割活性(图2C)。该结果证明了提高Tm和修饰碱基来提高结合亲和力可以增强TtAgo的dsDNA切割活性。作者进一步使用不同修饰的gDNA对此进行验证,结果如图D所示,表明并非所有修饰都能增强dsDNA切割活性,其活性还与其他因素相关。

图2:2'F修饰的gDNA增强TtAgo活性。(A)2'F-gDNA介导dsDNA切割活性增强假想图。(B)C-gDNA/TtAgo介导的ssDNA和dsDNA切割。(C)F1-gDNA和C-gDNA之间dsDNA切割活性的比较。(D)TtAgo与不同修饰gDNA联用性能比较。

FATE反应分析
    为了获得最佳结果,作者随后对2′F的修饰数量和位置进行了优化,如图3A和3B所示,结果表明3′端修饰3个2′F核苷酸的gDNA(F3-gDNA)是最佳修饰策略,即F3-gDNA辅助TtAgo活性增强(FATE)。在对FATE反应的温度和Mg2+浓度进行了优化后,作者比较了FATE反应和C-gDNA/TtAgo反应,结果表明FATE反应可提供约40倍的活性增强并可将最低反应温度从65°C降低到60°C。此外,作者还评估了FATE反应检测单碱基错配靶标和双碱基错配靶标的特异性,结果证明了FATE系统对于dsDNA切割超高活性和高度特异性。

图3. FATE系统性能分析。(A)2'F-核苷酸数量的优化。(B)gDNA中2'F修饰区域的比较。(C)FATE的反应温度优化。(D)FATE的Mg2+浓度优化。(E)FATE和C-gDNA/TtAgo系统之间dsDNA切割活性的比较。(F)单碱基错配的靶标。(G)FATE对单碱基错配靶标的特异性分析。(H)双碱基错配的靶标。(I)FATE对双碱基错配靶标的特异性分析。

FATE辅助核酸检测原理
    利用高效的FATE系统,作者开发了一种新颖的等温扩增方法,即FATE辅助核酸检测(FAST),原理如图4A所示。图4B的PAGE结果表明FAST检测效果符合预期,可以产生大量G4,并能在添加ThT后实现实时分析(图4C),促进实验设计和临床应用。

图4:FAST检测原理。(A)FAST检测原理。(B)FAST引发G4生成的PAGE分析。(C)基于ThT的实时FAST检测。


FAST在microRNA中的检测性能

  为了研究FAST的性能,作者构建了以microRNA-21(miR-21)为代表的检测平台,并与基于C-gDNA/TtAgo辅助等温核酸检测(CAST)平台进行了比较。结果表明,FAST对microRNA检测具有高灵敏性和高特异性。

图5:FAST用于microRNA检测。(A)FAST灵敏度分析。(B)FAST终点法荧光定量测量。(C) CAST灵敏度分析。(D)CAST终点法荧光定量测量。CAST 是指规范的 gDNA/TtAgo 辅助等温核酸检测。(E)和(F)FAST特异性分析。


FAST用于真实样品检测

    为了验证FAST的实用性,作者比较了FAST和RT-PCR对几种产miR21的细胞系及其培养上清液的分析性能,结果表明FAST检测方法对于核酸检测具有较高的灵敏度和良好的实用性。

图6:FAST测定的实际应用。 (A)用于细胞提取物和培养上清液中miR-21检测的FAST测定。 (B)用于miR-21检测的RT-PCR。 (C)图6B中细胞提取物和培养上清液的Ct分布。 (D)FAST和PCR的性能比较。


/总结/

Summarize

    作者发现TtAgo的dsDNA切割活性差的根本原因是gDNA、TtAgo和靶标之间的分子间作用力较弱,这阻碍了TtAgo-gDNA-靶标三元复合物的形成。基于此,开发了基于原子修饰的FATE策略来提高gDNA的Tm和结合亲和力,从而显著增强TtAgo活性。此外,利用FATE建立了一种新颖的、超灵敏的、高特异性的等温扩增技术(FAST),为快速分子诊断提供了有效工具。